一、實驗步驟
1. 制備單細胞懸液
消化貼壁細胞 / 處理組織,充分吹打成單細胞。
40~70 μm 濾網過濾,去除團塊(防止堵針)。
離心棄上清,用分選緩沖液重懸。
2. 細胞計數與濃度調整
濃度:1×10?~1×10? /mL
體積:根據分選量一般 100~500 μL / 管
3. 設對照管(必須?。?/h3>每組必須設:未染色細胞管(調電壓)
單陽性對照管(調節補償)
同型對照管(排除非特異性結合)
4. 抗體染色
細胞懸液中加入熒光抗體,避光孵育:
室溫:20~30 min
或 4℃:30 min
加分選緩沖液洗滌,離心去上清。
重懸,再次過篩,上機。
5. 活死染色(可選)
上機前加入 7-AAD 或 PI,排除死細胞。6. 上機分選
先跑未染色、單染管,調電壓、調補償。
圈選目的細胞群:
FSC/SSC 圈活細胞
去黏連、去碎片
根據熒光圈目標群
接收管預先加入完q培養基 / 血清(保護細胞)。
選擇分選模式:
純度優先(Purity)
富集模式(Enrich)
單細胞模式(Single cell)
7. 分選后處理
分選后離心,重懸培養 / 提取蛋白 / RNA。
可復檢流式,檢測分選純度
未染色細胞管(調電壓)
單陽性對照管(調節補償)
同型對照管(排除非特異性結合)
細胞懸液中加入熒光抗體,避光孵育:
室溫:20~30 min
或 4℃:30 min
加分選緩沖液洗滌,離心去上清。
重懸,再次過篩,上機。
先跑未染色、單染管,調電壓、調補償。
圈選目的細胞群:
FSC/SSC 圈活細胞
去黏連、去碎片
根據熒光圈目標群
接收管預先加入完q培養基 / 血清(保護細胞)。
選擇分選模式:
純度優先(Purity)
富集模式(Enrich)
單細胞模式(Single cell)
分選后離心,重懸培養 / 提取蛋白 / RNA。
可復檢流式,檢測分選純度
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